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[바이러스학 실험] cell culture & cell seeding

"[바이러스학 실험] cell culture & cell seeding"에 대한 내용입니다.
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최초등록일 2025.07.08 최종저작일 2025.03
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[바이러스학 실험] cell culture & cell seeding
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    • 🔬 바이러스학 실험의 세포 배양 및 동결보존 과정을 상세히 설명
    • 📊 실험 방법과 절차를 체계적으로 정리한 레포트
    • 🧬 세포 동결보존의 과학적 메커니즘을 깊이 있게 분석

    미리보기

    목차

    1. 실험 날짜

    2. 실험 제목

    3. 실험 목적

    4. 실험 방법

    5. 추가 조사
    1) 동결보존(cryopreservation)
    2) 동결보호제
    3) 동결보존법

    6. 참고문헌

    본문내용

    Ⅱ. 실험 제목
    cell culture & cell seeding

    Ⅲ. 실험 목적
    바이러스와 관련된 실험을 진행하기 위해 필요한 세포를 seeding하여 실험을 준비하는 과정에 대해서 알 수 있다.

    Ⅳ. 실험 방법
    Cell Culture - Subculture 방법
    1. 25T Flask 안에 있는 배지를 제거한다.
    2. DPBS 1mL 사용하여 Flask를 washing 후 제거한다.
    3. 0.05% Trypsin/EDTA 200µl를 넣고 37°C에서 1분간 반응시켜 붙어있는 cell을 분리한다.
    4. 2mL 배지를 사용하여 떨어뜨린 cell들을 모아 15mL tube에 옮긴다.
    5. pipetting 후 그중 100µl를 1.5mL tube에 옮긴 후 trypan blue 100ul를 섞어준다.
    6. 그중 10µl를 사용하여 cell을 counting 후 계산한다.
    7. 남아있는 cell들을 200 RCF, 5분간 centrifuge한다.
    8. Pellet만 남긴 후, 새로운 배지 1mL을 넣어주어 cell들을 resuspension한다.
    9. 25T Flask에 새 배지를 넣은 후, 0.7 x 10^6 cell의 양만큼 flask에 넣어 준다.
    10. 37°C, 5% CO2에서 incubation한다.

    참고자료

    · 김유강. “무혈청 배지를 이용한 Chinese Hamster Ovary 세포의 동결보존.” 석사학위, 건국대학교 대학원, pp. 8-9, 2006.
    · 박지성. “누에 혈림프 유래 Storage-protein 2를 이용한 중간엽줄기세포의 동결보존.” 석사학위, 인하대학교 일반대학원, pp. 27-31, 2014.
    · “냉동보존.” 네이버 지식백과. n.d. 수정, 2025년 03월 25일 접속, https://terms.naver.com/entry.naver?docId=423682&cid=60261&categoryId=60261
    · "Cryopreservation Methods and Frontiers in the Art of Freezing Life in Animal Models." IntechOpen. last modified Nov 11, 2021, accessed Mar 26, 2025, https://www.intechopen.com/chapters/79909
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    • 1. 세포 배양 및 계대배양(Subculture)
      세포 배양과 계대배양은 생명과학 연구의 기초가 되는 필수적인 기술입니다. 적절한 배양 조건 유지와 정기적인 계대배양을 통해 세포의 생리적 특성을 보존하면서 충분한 세포 수를 확보할 수 있습니다. 다만 계대배양 과정에서 세포의 유전적 변이나 표현형 변화가 누적될 수 있으므로, 계대 횟수 관리와 세포 특성 검증이 매우 중요합니다. 특히 암세포주의 경우 계대배양에 따른 변화가 더욱 심할 수 있어 신중한 모니터링이 필요합니다. 표준화된 배양 프로토콜 개발과 세포 뱅킹 시스템 구축은 연구의 재현성과 신뢰성을 높이는 데 필수적입니다.
    • 2. 동결보존(Cryopreservation)
      동결보존은 세포 자원의 장기 보관과 활용을 가능하게 하는 중요한 기술입니다. 액체질소를 이용한 초저온 보관으로 세포의 대사 활동을 거의 완전히 중단시켜 생물학적 특성을 유지할 수 있습니다. 그러나 동결-해동 과정에서 세포 손상이 발생할 수 있으며, 보존 기간 동안 세포 생존율 감소와 기능 저하가 나타날 수 있습니다. 효과적인 동결보존을 위해서는 적절한 동결보호제 선택, 최적의 냉각 속도 조절, 그리고 장기 보관 중 품질 관리가 필수적입니다. 세포 뱅킹 시스템 구축에 있어 동결보존 기술의 표준화는 생물자원의 효율적 관리와 연구의 지속성을 보장합니다.
    • 3. 동결보호제(Cryoprotectants)
      동결보호제는 동결보존 성공의 핵심 요소로, 세포 내외의 얼음 결정 형성을 억제하여 세포 손상을 최소화합니다. DMSO와 글리세롤이 가장 널리 사용되는 동결보호제이며, 각각의 장단점이 있어 세포 종류와 용도에 따라 선택해야 합니다. DMSO는 높은 투과성과 효율성을 보이지만 독성 문제가 있을 수 있고, 글리세롤은 상대적으로 안전하지만 투과 속도가 느립니다. 최근에는 여러 동결보호제를 조합하거나 새로운 물질 개발을 통해 보호 효율을 높이려는 연구가 진행 중입니다. 동결보호제의 농도, 노출 시간, 제거 방법 등을 최적화하는 것이 세포 생존율 향상에 매우 중요합니다.
    • 4. 완만 동결법과 유리화 동결법
      완만 동결법과 유리화 동결법은 각각 다른 원리와 장단점을 가진 동결보존 방법입니다. 완만 동결법은 천천히 냉각하면서 세포 외부의 물이 먼저 얼어 세포 내 수분이 삼투압에 의해 배출되도록 유도하는 방식으로, 상대적으로 간단하고 비용 효율적입니다. 반면 유리화 동결법은 매우 빠른 냉각 속도로 물을 결정화하지 않고 유리 상태로 만드는 방식으로, 더 높은 세포 생존율을 기대할 수 있습니다. 그러나 유리화 동결법은 고농도의 동결보호제가 필요하고 기술적으로 더 복잡하며 비용이 높습니다. 세포 종류, 보존 목적, 경제성 등을 고려하여 적절한 방법을 선택하는 것이 중요하며, 두 방법의 장점을 결합한 개선된 프로토콜 개발도 필요합니다.
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