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[A+] 2024 서강대 현대생물학실험1 2차 (His tagged eGFP 단백질의 발현 및 정제)

"[A+] 2024 서강대 현대생물학실험1 2차 (His tagged eGFP 단백질의 발현 및 정제)"에 대한 내용입니다.
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최초등록일 2025.06.29 최종저작일 2024.05
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[A+] 2024 서강대 현대생물학실험1 2차 (His tagged eGFP 단백질의 발현 및 정제)
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    소개

    "[A+] 2024 서강대 현대생물학실험1 2차 (His tagged eGFP 단백질의 발현 및 정제)"에 대한 내용입니다.

    목차

    1. Abstract
    2. Introduction
    3. Materials & Methods
    4. Results
    5. Discussion
    6. References

    본문내용

    이번 실험은 원하는 목적 단백질을 E.coli system에서 과발현시키고 정제하여 목적 단백질을 얻고 그 단백질을 확인하여 얻은 단백질의 농도를 정량하기 위함이다. 이번 실험에서의 목적 단백질은 eGFP로 6x His sequence를 포함하는 pET28a(+) vector에 eGFP 유전자를 cloning하였고 T7 RNA polymerase 유전자를 갖는 BL21(DE3) E.coli에 transformation하고 IPTG를 처리해 6x His tagged eGFP를 과발현시켰다. Sonication을 통해 세포를 파괴하여 protein mixture를 얻고 His tag와 니켈 이온 간의 친화성을 이용하는 affinity chromatography를 통해 eGFP를 정제했다. Ultrafiltration으로 eGFP sample을 농축하고 SDS-PAGE와 Coomassie blue staining을 통해 eGFP의 정상적인 과발현과 정제를 확인하였다. Extinction coefficient assay에서 280nm, 488nm에서의 흡광도를 이용해 정량한 단백질의 농도는 전체 eGFP 0.1827mM, functional eGFP 0.1268mM로 functional eGFP의 비율은 69.40%로 계산되었다. BSA standard curve를 그리고 750nm에서의 흡광도를 이용해 단백질을 정량한 Lowry assay에서는 eGFP 농도가 6.08mg/ml로 계산되었다. 이는 extinction coefficient assay를 통해 구한 3.59mg/ml(0.1268mM)보다 훨씬 큰 값으로 이는 Lowry assay가 아미노산 조성에 의해 영향을 받기 때문이다.

    참고자료

    · Yingying Ma, Jian Guo Yu (2015), The mechanism of dehydration in chromophore maturation of wild-type green fluorescent protein : A theoretical study, Chemical Physics Letters, pp. 42~46Shelley R. McRae, Christopher L. Brown (2005), Rapid purification of EGFP, EYFP, and ECFP with high yield and purity, Protein Expression and Purification, 41(1): 121~127
    · David L. Nelson (2021), Lehninger Principles of Biochemistry, 8th, W.H. Freeman and Company, pp. 86~88
    · Everette J. D., Quinton M. Bryant (2010), Thorough Study of Reactivity of Various Compound Classes toward the Folin-Ciocalteu Reagent, Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58(14): 8139~8144
  • AI와 토픽 톺아보기

    • 1. eGFP 단백질 발현 및 정제
      eGFP 단백질의 발현 및 정제는 분자생물학 연구에서 매우 중요한 기술입니다. 대장균을 이용한 발현 시스템은 비용 효율적이고 높은 수율을 제공하며, 다양한 정제 방법(친화성 크로마토그래피, 겔 크로마토그래피 등)을 통해 고순도의 단백질을 얻을 수 있습니다. 발현 조건 최적화(온도, 유도제 농도, 배양 시간)는 단백질 수율과 품질에 직접적인 영향을 미치므로 신중한 실험 설계가 필요합니다. 정제 과정에서 단백질의 활성을 유지하는 것이 중요하며, 적절한 완충액과 보존제 사용이 필수적입니다.
    • 2. 단백질 정량 방법 비교
      단백질 정량은 생화학 연구의 기초적이면서도 중요한 단계입니다. Bradford, BCA, Lowry 방법 등 다양한 정량 방법이 존재하며, 각각의 장단점이 있습니다. Bradford 방법은 빠르고 간단하지만 계면활성제에 민감하고, BCA 방법은 정확성이 높지만 시간이 더 소요됩니다. 연구 목적과 샘플의 특성에 따라 적절한 방법을 선택하는 것이 중요합니다. 또한 표준 단백질의 선택과 정확한 측정 기술이 결과의 신뢰성을 좌우하므로, 여러 방법을 병행하여 검증하는 것이 권장됩니다.
    • 3. SDS-PAGE 및 단백질 확인
      SDS-PAGE는 단백질의 분자량 확인과 순도 평가에 가장 널리 사용되는 기술입니다. 음이온 계면활성제인 SDS가 단백질을 균일하게 음전하로 만들어 전기영동 시 분자량에 따른 분리가 가능합니다. 적절한 겔 농도 선택, 샘플 준비, 전압 조건 설정이 결과의 질을 결정합니다. 염색 방법(Coomassie, 은염색)에 따라 감도와 배경이 달라지므로 목적에 맞는 선택이 필요합니다. 정량적 분석을 위해서는 표준 마커와의 비교가 필수적이며, 재현성 있는 결과를 위해 일관된 실험 조건 유지가 중요합니다.
    • 4. 형광 특성 분석
      eGFP의 형광 특성 분석은 단백질의 기능성과 품질을 평가하는 핵심 방법입니다. 여기파장(488nm)과 방출파장(509nm)의 측정을 통해 단백질의 성숙도와 활성을 확인할 수 있습니다. 형광 강도, 양자 수율, 형광 수명 등의 매개변수는 단백질의 구조적 완전성을 반영합니다. 형광분광법, 유동세포분석법, 형광 현미경 등 다양한 기술을 활용하여 다각적으로 분석할 수 있습니다. pH, 온도, 용매 등 환경 요인이 형광 특성에 영향을 미치므로, 표준화된 조건에서의 측정이 결과의 비교 가능성을 높입니다.
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