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[기기분석실험] Ultracentrifuge를 이용한 plasmid DNA prep

기기분석실험 당시 작성했던 레포트 입니다~ 해당 강의 A+ 받았어요
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최초등록일 2025.03.16 최종저작일 2021.10
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[기기분석실험] Ultracentrifuge를 이용한 plasmid DNA prep
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    소개

    기기분석실험 당시 작성했던 레포트 입니다~
    해당 강의 A+ 받았어요

    목차

    Ⅰ. Introduction
    - Experimental purpose

    - Experimental Theory
    1. Plasmid
    2. 형질전환(Transformation)의 원리
    3. Alkaline Lysis, Maxi prep
    4. CsCl-EtBr Equilibrium Centrifugation, Isopycnic centrifugation의 원리
    5. 원심분리기의 원리, ultracentrifuge

    Ⅱ. Experimental Methods

    Ⅲ. Results
    1.형질전환효율(Transformation efficiency) 계산 결과
    2. Plasmid DNA의 정량 및 전기영동 결과

    Ⅳ. Discussion

    Ⅴ. References

    본문내용

    1. Plasmid
    Plasmid는 세균 세포의 염색체와는 별도로 스스로 복제할 수 있는 DNA 분자이다. Plasmid는 다양한 크기로 존재하며, 모양에 따라 그 종류를 나눌 수 있다. 첫번째로 Open-circular plasmid는 DNA가 원형으로 존재하는 형태로 한 가닥에 틈(Nick)이 존재한다. Relaxed circular는 틈 없이 완전한 원형의 형태로 존재하는 것이다. 선형으로 존재하는 것은 linear DNA라고 한다. 마지막으로 supercoiled(closed-circular) 형태를 가지는 DNA 종류가 있는데, 이는 DNA 가닥이 꼬여 가장 뭉친 상태로 존재하는 것을 의미한다.

    2. 형질전환(Transformation)의 원리
    형질전환은 외부 DNA를 숙주세포(Host cell)로 도입시켜 새로운 형질을 갖는 세포를 만드는 것을 의미한다. 형질전환 시에는 정상적인 박테리아에 화학적 처리를 하여 DNA가 잘 들어갈 수 있게 만든 Competent cell을 이용한다. 외부 DNA를 도입하는 방법은 크게 Electroporation, Heat shock이 있다. Heat shock은 열 충격을 주는 방법으로 plasmid를 도입할 competent cell에 calcium chloride를 처리한 후, 42도 온도에서 90초간 열을 가하는 방법이다. Electroporation은 세포에 전기
    장을 가하여 순간 전압을 뒤집어 막의 투과성을 증가시켜 cell 내에 plasmid를 도입하는 방법이다. 이 경우는 따로 calcium chloride 처리를 해주지 않는데, competent cell에 이온이 직접적으로 반응을 해야 하기 때문이다. 효율적인 면에서는 Electroporation 방법이 좋지만, Heat shock 방법이 더 간편하다.

    참고자료

    · 부성희 외. 생화학실험. 서울: 청문각
    · Ethanol Precipitation of DNA and RNA: How it works. 2019년 11월 2일 검색.https://bitesizebio.com/253/the-basics-how-ethanol-precipitation-of-dna-and-rna-works/
    · Molecular Biology of the Gene. Watson저. (7판). Cold Spring Haber Laboratory
    · Plasmid. 미생물학백과. 한국미생물학회. http://www.msk.or.kr
    · pGAL을 이용한 E.coli의 형질전환. THE BIOTECHNOLOGY EDUCATION COMPANY
    · 원심분리기의 기본원리. YounginFrontier.
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    • 1. 플라스미드(Plasmid)
      플라스미드는 현대 분자생물학 연구의 핵심 도구로서 매우 중요한 역할을 합니다. 박테리아에서 자연적으로 발견되는 원형 DNA 분자인 플라스미드는 유전자 클로닝, 단백질 발현, 그리고 유전자 치료 연구에 광범위하게 활용됩니다. 특히 선택 마커 유전자를 포함하고 있어 형질전환된 세포를 효율적으로 선별할 수 있다는 점이 장점입니다. 다양한 크기와 특성의 플라스미드가 개발되어 있어 연구 목적에 맞게 선택할 수 있습니다. 다만 플라스미드의 안정성, 복제 수 조절, 그리고 숙주 세포에서의 발현 수준 최적화 등은 여전히 개선이 필요한 영역입니다. 앞으로 더욱 효율적이고 안전한 플라스미드 시스템의 개발이 기대됩니다.
    • 2. 형질전환(Transformation)
      형질전환은 외부 DNA를 세포 내로 도입하는 기술로, 유전공학의 가장 기본적이면서도 필수적인 방법입니다. 박테리아의 경우 화학적 형질전환과 전기천공법이 널리 사용되며, 각각의 방법은 장단점이 있습니다. 형질전환 효율은 DNA의 질, 세포의 준비 상태, 그리고 사용된 방법에 따라 크게 달라집니다. 높은 형질전환 효율을 달성하기 위해서는 최적화된 프로토콜과 신선한 시약이 중요합니다. 현대에는 다양한 형질전환 방법이 개발되어 있어 연구 목적과 세포 종류에 따라 선택할 수 있습니다. 형질전환 기술의 지속적인 개선은 유전공학 연구의 효율성을 높이는 데 매우 중요합니다.
    • 3. 알칼리 용해법(Alkaline Lysis) 및 Maxi-prep
      알칼리 용해법은 플라스미드 DNA를 추출하는 가장 널리 사용되는 방법으로, 간단하면서도 효과적입니다. 이 방법은 높은 pH 환경에서 박테리아 세포벽과 세포막을 파괴하고, 염색체 DNA는 변성시키면서 플라스미드 DNA는 보존하는 원리를 이용합니다. Maxi-prep은 대량의 플라스미드를 추출할 때 사용되는 확장된 형태로, 연구나 산업 응용에 필요한 충분한 양의 DNA를 얻을 수 있습니다. 이 방법의 장점은 비용 효율성과 재현성이 우수하다는 점입니다. 다만 추출된 DNA의 순도와 농도는 프로토콜 준수와 사용된 시약의 질에 따라 달라질 수 있습니다. 현대에는 상용화된 키트가 많아 더욱 편리하게 사용할 수 있습니다.
    • 4. CsCl-EtBr 등밀도 원심분리(Isopycnic Centrifugation)
      CsCl-EtBr 등밀도 원심분리는 플라스미드 DNA를 고도로 정제하는 고전적이면서도 매우 효과적인 방법입니다. 이 기술은 DNA의 밀도 차이를 이용하여 원형 플라스미드와 선형 또는 원형 염색체 DNA를 분리할 수 있습니다. 에티듐 브로마이드(EtBr)가 DNA에 삽입되면 밀도가 변하는데, 초나선형 플라스미드와 이완된 원형 DNA의 밀도 차이를 이용하여 분리합니다. 이 방법으로 얻은 플라스미드는 매우 높은 순도를 가지므로 민감한 실험에 적합합니다. 다만 장시간의 원심분리가 필요하고, 에티듐 브로마이드의 독성 문제로 인해 현대에는 사용이 감소하고 있습니다. 더 안전한 대체 방법들의 개발이 진행 중입니다.
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      이 문서는 초원심분리의 원리와 plasmid DNA 분리 및 정제 방법을 체계적으로 설명하고 있으며, 실험 결과와 토의를 통해 실험의 성과와 한계점을 잘 분석하고 있습니다.
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