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서강대 현대생물학실험2 competent cell, PCR, 전기영동

서강대 현대생물학실험2 "competent cell, PCR, 전기영동"에 대한 내용입니다.
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최초등록일 2023.12.08 최종저작일 2023.09
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서강대 현대생물학실험2 competent cell, PCR, 전기영동
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    소개

    서강대 현대생물학실험2 "competent cell, PCR, 전기영동"에 대한 내용입니다.

    목차

    1. Abstract
    2. Intro
    3. Materials and Methods
    4. Result
    5. Discussion
    6. References

    본문내용

    1.Abstract
    본 실험에서는 본격적인 실험에 앞서 LB broth와 LB agar plate를 만든다. 이는, 배지나 멸균, 시약 제조 방법에 대해 기본 지식을 습득하기 위함이다. 실험에서 사용한 LB broth는 tryptone, yeast extract, NaCl을 넣어 만들고 LB agar plate는 이 LB broth에 agar를 넣어 고체화한 것이다. 다음으로 Competent cell을 제조한다. 형질 전환의 개념과 형질 전환 효율 계산법을 이해하고 competent cell의 의미와 제조법을 이해하기 위한 과정이다. Competent cell은 LB plate에 streaking해서 키운 DH5α의 colony 한 개를 따서 LB broth에 접종하고 배양한 뒤 그 중 일부를 다시 LB flask에 접종해 배양한다. 원심분리해 세포만 침전시켜 CaCl2와 glycerol로 풀어줘 만든다. 만든 competent cell을 plasmid DNA와 섞고 incubation한 뒤 heat shock 후 얼음에서 incubation한 뒤 LB plate에 spreading한다. 하루 밤 동안 37 ℃ incubator에서 배양하고 다음날 아침에 꺼내서 colony 수를 세 형질전환 효율을 계산한다. 그 다음은 소량의 DNA를 다량으로 증폭하기위해 PCR을 진행한다. Template, primer, dNTP, Taq polymerase, PCR buffer를 넣고 PCR 기계를 돌린다. PCR은 denaturation, annealing, extension과정이 약 25 cycle 돌아간다. PCR이 종료되면 전기영동과 DNA purification을 이해하기 위해 전기영동과 DNA purification을 진행한다. Agarose와 TAE buffer를 넣어 agarose gel을 만들고 PCR sample과 loading dye를 섞어 well에 loading한다. DNA ladder도 함께 loading한다. 전기영동이 후 UV lamp에서 band를 확인해 원하는 위치의 DNA band가 있는 gel을 잘라 GB buffer와 섞어 녹이고 NW buffer, elution buffer를 차례대로 column에 넣고 원심분리해 최종적으로 DNA를 얻는다.

    참고자료

    · T.A.Brown(2012), 유전자 클로닝과 DNA 분석, 제6판, 월드사이언스, pp.94-95, 111-113
    · Geoffrey M. Cooper, Robert E. Hausman, The Cell: A molecular Approach, 7th edition, Sinauer Oxford, pp.130-132
    · David L. Nelson, Michael M. Cox & Aaron A. Hoskins(2023), 레닌저 생화학, 8th ed, 월드사이언스, pp. 285-286, 303-308
  • AI와 토픽 톺아보기

    • 1. 형질전환(Transformation)과 Competent Cell
      형질전환은 분자생물학 연구의 핵심 기술로, 외부 DNA를 세포 내로 도입하는 과정입니다. Competent cell의 준비는 형질전환 효율을 결정하는 중요한 요소입니다. 화학적 방법으로 준비된 competent cell은 CaCl2 처리를 통해 세포막의 투과성을 증가시키며, 이는 비용 효율적이고 실험실에서 쉽게 수행할 수 있습니다. 전기천공법은 더 높은 형질전환 효율을 제공하지만 장비 투자가 필요합니다. 형질전환 효율은 DNA 품질, competent cell의 상태, 회복 배지의 선택 등 여러 변수에 영향을 받으므로, 각 단계에서의 정밀한 제어가 필수적입니다. 이 기술은 유전자 클로닝, 단백질 발현, 유전자 편집 등 다양한 응용 분야에서 기초가 됩니다.
    • 2. PCR(Polymerase Chain Reaction)
      PCR은 현대 분자생물학에서 가장 강력하고 광범위하게 사용되는 기술입니다. 특정 DNA 서열을 선택적으로 증폭할 수 있어 극소량의 DNA로부터 충분한 양의 산물을 얻을 수 있습니다. 온도 사이클링을 통한 변성, 어닐링, 신장 과정은 매우 효율적이며, 적절한 프라이머 설계와 최적화된 반응 조건이 성공의 핵심입니다. 실시간 PCR(qPCR)은 정량적 분석을 가능하게 하여 유전자 발현 분석에 널리 사용됩니다. 디지털 PCR은 절대 정량화를 제공하여 더욱 정확한 결과를 얻을 수 있습니다. PCR의 민감성과 특이성은 진단, 법의학, 환경 모니터링 등 다양한 분야에서 혁신적인 응용을 가능하게 했습니다.
    • 3. 전기영동(Gel Electrophoresis)과 DNA 정제
      전기영동은 DNA, RNA, 단백질 등 생체 고분자를 크기와 전하에 따라 분리하는 기본적이면서도 필수적인 기술입니다. 아가로스 겔 전기영동은 DNA 단편의 크기 분석에 효과적이며, 폴리아크릴아마이드 겔은 더 높은 해상도를 제공합니다. DNA 정제는 PCR 산물, 제한효소 절단 산물, 플라스미드 등을 순수하게 얻기 위해 필수적입니다. 겔 추출, 컬럼 기반 정제, 침전 방법 등 다양한 정제 기법이 있으며, 각각의 장단점을 고려하여 선택해야 합니다. 정제된 DNA의 순도와 농도는 후속 실험의 성공을 크게 좌우하므로, 분광광도계를 이용한 정확한 정량화가 중요합니다.
    • 4. 배지 제조 및 멸균
      배지 제조와 멸균은 미생물 배양의 기초로서, 실험 결과의 신뢰성을 보장하는 중요한 단계입니다. 배지의 성분 선택은 배양하려는 미생물의 영양 요구사항에 따라 결정되어야 하며, 정확한 계량과 혼합이 필수적입니다. 고압증기멸균은 가장 일반적이고 효과적인 멸균 방법으로, 121°C에서 15-20분간 처리하여 대부분의 미생물과 포자를 제거합니다. 필터 멸균은 열에 민감한 성분을 포함한 배지에 사용됩니다. 멸균 후 배지의 무균성 유지는 오염 방지를 위해 매우 중요하며, 적절한 보관 조건과 취급 방법이 필요합니다. 배지의 pH, 삼투압, 영양소 농도 등의 정확한 조절은 재현성 있는 실험 결과를 얻기 위한 필수 조건입니다.
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