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국내에서 유통되는 8종의 식육감별을 위한 multiplex PCR법 개발

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최초등록일 2023.04.05 최종저작일 2016.02
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국내에서 유통되는 8종의 식육감별을 위한 multiplex PCR법 개발
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    서지정보

    · 발행기관 : 한국식품위생안전성학회
    · 수록지 정보 : 한국식품위생안전성학회지 / 31권 / 1호
    · 저자명 : 허은정, 고은경, 윤향진, 김연화, 김영조, 박현정, 위성환, 문진산

    목차

    Materials and Methods
    시료
    DNA 추출 및 농도 측정
    프라이머 설계 및 PCR 반응 조건
    Multiplex PCR법의 특이도 및 민감도 조사
    Results and Discussion
    Multiplex PCR법의 최적화
    Multiplex PCR법의 축종별 민감도 및 특이도
    Acknowledgment
    국문요약
    References

    초록

    본 연구에서는 국내 대표 식육인 소, 돼지, 닭, 오리의4종 식육과 염소, 양, 말, 칠면조의 4종 식육을 동시에 신속하게 감별할 수 있는 2 set의 multiplex PCR법을 개발하고자 미토콘드리아 16S RNA에서 종 특이부위를 선발하고 각 종에 대한 특이도를 높이기 위하여 인위적인 미스매치를 주어 프라이머를 제작한 후 8종 식육의 274개시료를 대상으로 특이도와 민감도를 조사하였다. 그 결과소, 돼지, 닭, 오리 모든 시료에서 각각 279, 94, 192, 477 bp의 증폭산물이, 말, 양, 염소, 칠면조의 모든 시료에서 각각 152 bp, 271 bp, 670 bp, 469 bp에서 뚜렷한 PCR 유전자 산물이 확인되어 모든 축종에서 100%의 특이도를 나타내어 축종별 감별력이 우수한 것으로 나타났다. 8종의 축종별로 DNA를 10 ng/μl으로 정량한 후 혼합물을 10배씩 단계 희석하여 반응여부를 조사한 결과, 소, 돼지, 오리에서는 100 fg까지, 닭에서는 1 pg까지 검출됨을 확인할수 있었다. 소, 돼지, 닭, 오리고기를 99.9%, 99%, 90%,70%, 50%, 30%, 10%, 1%, 0.1%의 비율로 혼합한 식육과 83℃ 20분, 100℃ 30분, 121℃ 10분에서 각각 열처리한 가열 혼합육에 대하여 검출한계를 조사한 결과 마지막단계의 희석 비율인 모든 혼합육의 0.1%에서 검출이 가능하였으며, 열처리 혼합육에서는 닭에서는 1% 농도에서소와 돼지의 혼합육에서 0.1% 농도에서 검출되어 민감도가 높음을 확인할 수 있었다. 본 연구에서 개발된 multiplex PCR법은 특이도 및 민감도에 있어서 국내 대표 식육을 감별하는데 있어서 유용한 것으로 평가된다.

    영어초록

    Species identification of animal tissues in meat products is an important issue to protect the consumer from illegal and/or undesirable adulteration; for economic, religious and health reasons. In this reason, accurate analytical methods are needed for the labeling of meat products with requiring simple and fast procedure. Recently, applications of PCR in food analysis have been increased because of their simplicity, specificity and sensitivity. Therefore, in this study, a multiplex PCR assay was developed for the simultaneous identification of eight species of cow, pig, chicken, duck, goat, sheep, horse and turkey from raw meats. The primers were designed in different regions of mitochondrial 16S RNA after alignment of the available sequences in the GenBank database. Two multiplex primer sets were designed as Set 1 (cow, pig, chicken, duck) and Set 2 (goat, sheep, horse, turkey), respectively. Total 274 samples from cow (n = 55), pig (n = 30), chicken (n=30), and duck (n = 30), goat (n = 40), sheep (n = 33), horse (n = 41), and turkey (n = 15) were tested. The primers generated specific fragments of 94, 192, 279, 477 bp (pig, chicken, cow, duck), 670, 271, 152, 469 bp (goat, sheep, horse, turkey) lengths for eight species, respectively. The animal species specificity was 100% in all eight samples in the multiplex PCR assay. The detection limit of the multiplex PCR assay showed from 100 fg to 1 pg of template DNA from extracted from raw meats. When applying multiplex PCR assays to sample from pork/beef and pork/chicken, beef/chicken tested raw mixed meats and heat-treated (83℃ for 30min, 100℃ for 20min, and 121℃ for 10min) mixtures, detection limit was 0.1% level beef, pork and pork in beef and chicken in pork and 1.0% level pork in chicken. This study suggest that the developed multiplex PCR assay can be used for rapid and simultaneous species identification of cow, pig, chicken, duck, goat, sheep, horse and turkey from meats.

    참고자료

    · 없음
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