TA 클로닝과 형질전환을 이용한 재조합 플라스미드 제작
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Digestion & Ligation, Transformation, Blue & White selection
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2025.03.02
문서 내 토픽
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1. TA 클로닝TA 클로닝은 PCR 산물의 3' 말단에 부가된 deoxyadenosine(dA)과 T-vector의 3' 말단의 deoxythymidine(dT)이 상보적으로 수소결합하는 원리를 이용한 클로닝 방법이다. Topoisomerase가 CCTT 염기서열을 인지하여 nick이나 결손 부위를 연결하고, PCR 산물과 vector가 만나면 topoisomerase가 양쪽의 PO3와 OH기를 연결하여 covalent bond energy를 통해 짧은 시간에 ligation이 진행된다. 추가적인 ligase 없이도 효율적으로 재조합 플라스미드를 제작할 수 있다.
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2. 형질전환과 수용성 세포수용성 세포(competent cell)는 화학적 처리를 통해 외부 DNA를 높은 효율로 흡수할 수 있도록 제작된 세포이다. DH5a는 recA- 유전자를 가지며 클로닝용으로 사용되고, BL21(DE3)는 recA+를 가지며 단백질 발현용으로 사용된다. Heat shock 방법은 CaCl2 처리로 DNA가 세포 표면에 부착하도록 하고 열 자극으로 세포막을 탈분극시켜 DNA를 세포 내로 도입한다. Electroporation은 1.5 kV/cm의 전기장으로 세포막에 구멍을 만들어 plasmid DNA를 전달한다.
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3. Blue & White 선별AxKI plate는 Ampicillin, X-Gal, Kanamycin, IPTG를 포함한다. Ampicillin과 Kanamycin은 항생제로 저항성이 없는 균을 제거한다. X-Gal은 β-galactosidase 활성을 확인하며, IPTG는 lac operon의 inducer로 lacZ 발현을 향상시킨다. Insert가 삽입되지 않으면 β-galactosidase가 X-Gal을 분해하여 파란색 colony가 형성되고, insert가 삽입되면 β-galactosidase가 발현되지 않아 하얀색 colony가 형성된다.
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4. 실험 결과 분석모든 조에서 colony 생성이 관찰되지 않았으며, 이는 DH5a competent cell에 재조합 plasmid가 삽입되지 않아 항생제에 의해 모두 사멸한 것으로 해석된다. 실패 원인은 CaCl2 처리 부족, heat-shock 과정의 문제, ice에서의 recovery 부족, 또는 ice 반응 시간 부족 등으로 추정된다. 확률적으로는 극소수의 DH5a에만 plasmid가 삽입되었으나 40분 배양 후 100㎕ 샘플에 충분한 수의 형질전환 세포가 포함되지 않았을 가능성도 있다.
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1. TA 클로닝TA 클로닝은 PCR 산물을 효율적으로 벡터에 삽입하는 매우 실용적인 방법입니다. Taq 폴리머라제가 생성하는 3' 아데닌 오버행과 벡터의 3' 티민 오버행이 상보적으로 결합하는 원리는 간단하면서도 효과적입니다. 특히 빠른 클로닝이 필요한 상황에서 매우 유용하며, 추가적인 제한효소 처리가 필요 없어 시간과 비용을 절약할 수 있습니다. 다만 삽입 효율이 일반 클로닝에 비해 낮을 수 있고, 벡터의 자가 연결이 발생할 수 있다는 점은 고려해야 합니다. 전반적으로 분자생물학 실험에서 매우 중요한 기술이라고 평가합니다.
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2. 형질전환과 수용성 세포형질전환은 외부 DNA를 세포 내로 도입하는 핵심 기술이며, 수용성 세포의 준비 상태가 성공률을 크게 좌우합니다. 화학적 형질전환에서 염화칼슘 처리로 세포막의 투과성을 증가시키는 원리는 효과적이고 비용 효율적입니다. 수용성 세포는 적절한 온도와 배양 조건에서 준비되어야 하며, 세포의 생리 상태가 매우 중요합니다. 전기천공법 등 다른 방법도 있지만, 대장균 형질전환에서는 화학적 방법이 여전히 널리 사용됩니다. 형질전환 효율을 높이기 위해서는 세포 준비 과정의 세심한 조절이 필수적입니다.
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3. Blue & White 선별Blue & White 선별은 재조합 클론과 비재조합 클론을 시각적으로 구분하는 우아한 방법입니다. lacZ 유전자의 α-펩타이드 부분에 다중 클로닝 부위를 삽입하여, 외부 DNA 삽입 시 lacZ 기능이 중단되는 원리는 매우 효율적입니다. X-gal 기질을 사용하면 파란색(비재조합)과 흰색(재조합) 콜로니를 쉽게 구분할 수 있어 스크리닝 과정이 간단합니다. 이 방법은 수십 년 동안 사용되어 온 검증된 기술이며, 현재도 많은 실험실에서 표준 방법으로 사용되고 있습니다. 다만 일부 벡터에서는 적용이 제한될 수 있다는 점을 고려해야 합니다.
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4. 실험 결과 분석실험 결과 분석은 과학적 연구의 가장 중요한 단계 중 하나입니다. 객관적인 데이터 해석, 통계적 검증, 그리고 예상과의 비교를 통해 실험의 성공 여부를 판단해야 합니다. 분자생물학 실험에서는 겔 전기영동, DNA 시퀀싱, 정량 분석 등 다양한 방법으로 결과를 확인합니다. 결과 분석 시 오류 가능성, 반복성, 그리고 생물학적 의미를 함께 고려해야 합니다. 부정적인 결과도 과학적 가치가 있으며, 이를 통해 실험 방법을 개선하고 새로운 가설을 수립할 수 있습니다. 투명하고 정직한 결과 보고는 과학 연구의 신뢰성을 유지하는 데 필수적입니다.
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[세포생물학] 세포생물학 연구를 위한 분석 기법 18페이지
1. 일반광학현미경(light or bright-field microscope)광원으로부터 나오는 빛을 집속렌즈가 빛을 모아서 시료에 조사하면 대물렌즈에서 일차확대상을 만든후 대안렌즈에서 최종 배율(확대된상)을 결정하여 눈으로 관찰할 수 있게된다.대안렌즈는 대개 10배의 배율을 갖고, 대물렌즈는 보통 4, 10, 25, 40, 100배 렌즈중에서 선택을 할수 있으므로 만일 10배의 대물렌즈로 시료를 관찰한다면 최종 관찰배율은 10x10=100 즉 100배의 배율이 된다.2. 형광현미경(fluorescece microscope)파장이...2025.09.02· 18페이지 -
유전공학의 이해 3판 6장 정리 <재조합 DNA> 5페이지
6장6.1 재조합 DNA형질전환 – 재조합 DNA(recombinant DNA) 를 다른 세포에 도입, 발현시키는 과정클로닝(cloning) – DNA 를 재조합하고 이를 다시 숙주세포로 도입하여 특정 유전자를 다량 획득하는 과정, 즉 증폭과 정제를 일컫는 말.제한효소에 의한 재조합 DNA 분자의 제작재조합 DNA 분자 제작의 가장 일반적이며 전형적인 방법은 제한 효소와 DNA 라이게이즈를 이용하여 제작하는 방법이다.플라스미드 벡터를 이용한 재조합 DNA 분자의 제작특정 제한효소로 잘려진 플라스미드 벡터를 원하는 DNA 분자와 DN...2020.12.09· 5페이지
