전배양과 탈염과정을 포함하는 DNA 추출법을 이용한 분자생물학적 방법으로 수산물 중 오염된 Salmonella spp.의 검출

서지정보

ㆍ발행기관 : 한국식품위생안전성학회 ㆍ수록지정보 : 한국식품위생안전성학회지 / 38권 / 3호
ㆍ저자명 : 송예준, 조경진, 손은익, 조두민, 김영목, 박슬기

목차

ABSTRACT
Materials and Methods
사용 균주
수산물(패류) 시료
배양 시간에 따른 Salmonella spp. 증균 효율
Salmonella spp.를 인위적으로 감염시킨 홍합 시료
수산물(패류) 시료에서 신속한 DNA extraction
Salmonella spp. 검출을 위한 PCR 조건
통계 분석
Results and Discussion
배양 시간에 따른 Salmonella spp.의 증균 효율
탈염 과정이 포함된 DNA extraction 방법
인공위적으로 감염시킨 홍합 시료를 이용한 전처리 방법의 검증
Acknowledgement
국문요약
References

한국어 초록

본 연구에서는 수산물 시료 중 Salmonella spp. 검출을 위해 단시간의 전배양(2시간 이내)과 탈염과정을 포함한 DNA 추출법을 사용하여 분자생물학적 검출을 위한 수산 물 전처리 방법에 대해 연구하였다. 배양 시간에 따른 증 균 효율을 탐색하기 위해 100, 101 및 102 CFU/mL농도 의 Salmonella spp. 5종을 NB 0.5에 접종하여 증균 전, 1시간 및 2시간 동안의 증균 효율을 비교하였다. 그 결 과, 2시간 동안 모든 농도에서 약 1 log CFU/mL가 증균 되어 초기 농도와 유의적인 차이가 나타났다. 또한 지역 별 패류시료에 S. Typhimurium을 인위적으로 감염시킨 뒤 DNA를 추출하여 염농도를 측정한 결과, 모든 시료의 염농도가 0%로 DNA 추출과 동시에 탈염이 이루어진 것 을 확인하였다. 이후 추출한 DNA를 사용하여 PCR을 수 행한 결과 모든 시료에서 S. Typhimurium의 특이적 양성 밴드가 확인되었다. 다음으로 수산물 시료 중 Salmonella spp. 검출을 위한 증균 과정과 탈염을 포함한 DNA 추출 방법의 검증을 위해 멸균 홍합시료 및 비멸균 홍합시료 에 Salmonella spp. 5종을 인공적으로 약 100, 101, 102 CFU/g의 농도로 오염시켜 전배양과 DNA를 추출하여 PCR로 특이적 증폭 밴드의 여부를 확인한 결과, 모든 농 도의 Salmonella spp. 5종에서 특이적 밴드가 확인되었다 . 결과적으로 본 연구에서 제시한 전배양 및 DNA 추출 방법을 포함한 전처리 방법과 PCR을 사용하여 수산물 시 료에서 10 CFU/g 미만의 Salmonella spp.를 검출하였으 며, 시간과 비용면에서 효율적이며 과정이 복잡하기 않기 때문에 수산물의 처리 현장에 활용될 수 있을 것으로 기 대된다.

영어 초록

Salmonella spp. are prevalent foodborne pathogens that are infective at relatively low concentrations, thus posing a serious health threat, especially to young children and the elderly. In several countries, the management and regulation of Salmonella spp. in food, including seafood, adhere to a negative detection standard. The risk of infection is particularly high when seafood is consumed raw, which underscores the importance of timely detection of pathogenic microorganisms, such as Salmonella. Accordingly, this study aimed to develop a combined pre-treatment and detection method that includes pre-culture and DNA extraction in order to detect five species of Salmonella at concentrations below 10 CFU/mL in seafood. The effectiveness of the proposed method was assessed in terms of the composition of the enrichment (pre-culture) medium, minimum incubation time, and minimum cell concentration for pathogen detection. Furthermore, a practical DNA extraction method capable of effectively handling high salt conditions was tested and found to be successful. Through polymerase chain reaction, Salmonella spp. were detected and positively identified in shellfish samples at cell concentrations below 10 CFU/g. Thus, the proposed method, combining sample pre-treatment and cell culture with DNA extraction, was shown to be an effective strategy for detecting low cellular concentrations of harmful bacteria. The proposed methodology is suitable as an economical and practical in situ pre-treatment for effective detection of Salmonella spp. in seafood.

참고 자료

없음